Хулоса

Ҳадаф
Провести сравнительную оценку эффективности остеопластических материалов на основе гидроксиапатита и биоактивного стекла при замещении экспериментально созданных костных дефектов нижней челюсти у кроликов на основании морфологических и рентгеноденситометрических показателей в сроки до 3 месяцев.
Мавод ва усулҳо
Проведено экспериментальное исследование с вовлечением 30 кроликов породы «Шиншилла». Животные были рандомизированы в две группы по 15 особей: контрольная группа (OsteonТМ II) и основная группа (биоактивное стекло + обогащенная тромбоцитами плазма + линкомицин). Моделировали стандартизированный костный дефект диаметром 6 мм в области угла нижней челюсти. Оценку проводили гистологическими и рентгеноденситометрическими методами через 7, 14, 21, 30, 60 и 90 дней.
Натиҷаҳо
На 7 сутки в обеих группах наблюдалась грануляционная ткань с прорастанием сосудов. К 60 суткам в основной группе сформировалась пластинчатая костная ткань с полной интеграцией (оптическая плотность 650±45 HU), в контрольной группе сохранялись участки балочного строения (620±38 HU). К 90 суткам показатели составили 850±52 HU и 625±41 HU, соответственно (p<0,05). Полное восстановление архитектоники в основной группе наступило, в среднем, на 45 дней раньше.
Хулоса
Применение биоактивного стекла в комплексе с обогащенной тромбоцитами плазмой статистически значимо ускоряет репаративный остеогенез и обеспечивает формирование костной ткани с более высокими показателями минерализации, по сравнению с материалом OsteonТМ II.

Калимаҳои калидӣ

остеопластические материалы гидроксиапатит биоактивное стекло костный дефект челюсть эксперимент кролики.

Матни пурра

Боргирии мақола дар PDF

Нусхаи пурраи мақола дар формати PDF

Рӯйхати адабиёт

  1. Ананьева АШ, Бараева ЛМ, Быков ИМ, Веревкина ЮВ, Курзанов АН. Моделирование повреждений костных структур в экспериментах на животных. Инновационная медицина Кубани. 2021;1:47-55. https://doi.org/10.35401/2500-0268-2021-21-1-47-55
  2. Сидорук В.А., Фоменко И.В., Касаткина А.Л., Сидорук А.В., Тимаков И.Е., Долгова И.В. Сравнительный анализ результатов хирургического лечения детей с одонтогенной воспалительной кистой челюсти. Вестник Волгоградского государственного медицинского университета. 2025;22(2):180-185. doi: 10.19163/1994-9480-2025-22-2-180-185.
  3. Азимов МИ, Кудратов ШШ. Показания к применению деминерализованной костной ткани при лечении кист челюстей. Стоматология. 2006;1-2:16-18.
  4. Акбаров АН, Тулаганов ЖШ, Тулаганов ДУ. Альтернативные биоматериалы, предназначенные для остеозамещения: получение и тестирование. International Dental Review. 2016;3:40-44.
  5. Майбородин И.В., Саркисянц Б.К., Шеплев Б.В., Майбородина В.И., Шевела А.А. Морфологическая оценка результатов дентальной имплантации. Казанский медицинский журнал. 2025. doi: 10.17816/KMJ640899.
  6. Dohan Ehrenfest DM, Doglioli P, de Peppo GM, Del Corso M, Charrier JB. Choukroun's platelet-rich fibrin (PRF) stimulates in vitro proliferation and differentiation of human oral bone mesenchymal stem cell in a dose-dependent way. Arch Oral Biol. 2021;55(3):185-194.
  7. Алексеева ИС, Кулаков АА, Гольдштейн ДВ, Волков АВ. Восстановление костной ткани после удаления зубов при использовании тканеинженерной конструкции на основе мультипотентных стромальных клеток жировой ткани. Стоматология. 2012;91(4):32-35.
  8. Амраев СА, Абуджазар УМ, Абдуразаков УА, Байзаков АР, Турекулов РС. Локальное использование биодеградируемых материалов в лечении хронического остеомиелита (обзор литературы). Вестник КазНМУ. 2018;1:199-204.
  9. Percie du Sert N, Hurst V, Ahluwalia A, Alam S, Avey MT, Baker M, et al. The ARRIVE guidelines 2.0: Updated guidelines for reporting animal research. PLoS Biol. 2020;18(7):e3000410.
  10. Hench LL, Thompson I. Twenty-first century challenges for biomaterials. J R Soc Interface. 2022;7(Suppl 4):S379-S391.
  11. Rahaman MN, Day DE, Bal BS, Fu Q, Jung SB, Bonewald LF, Tomsia AP. Bioactive glass in tissue engineering. Acta Biomater. 2022;7(6):2355-2373.
  12. Dohan Ehrenfest DM, Rasmusson L, Albrektsson T. Classification of platelet concentrates: from pure platelet-rich plasma (P-PRP) to leucocyte- and platelet-rich fibrin (L-PRF). Trends Biotechnol. 2021;27(3):158-167.
  13. Zhang Y, Wang P, Mao H, Zhang Y, Zheng L, Yu Y, et al. PEGylated gold nanoparticles promote osteogenic differentiation in in vitro and in vivo systems. Mater Sci Eng C. 2023;71:756-767.
  14. Amini AR, Laurencin CT, Nukavarapu SP. Bone tissue engineering: recent advances and challenges. Crit Rev Biomed Eng. 2023;40(5):363-408.
  15. Абдуллаев ШЮ, Исломхужаева ФХ. Потребность населения в дентальной имплантации и частота ее применения. Стоматология. 2017;4:45-47.
  16. Бойко ЕМ и др. Малоинвазивный метод направленной костной регенерации при атрофии альвеолярного гребня. Медицинский алфавит. 2017;1:5-8.
  17. Boichuk SV, Zhitlova EA, Shakirova FV, Tsyplakov DE, Akhtiamov IF, Deviatov FV, et al. A comprehensive approach to the in vitro and in vivo study of a preparation containing etidronate of lanthanide and calcium ions. Genij Ortopedii. 2019;25(4):561-568. doi: 10.18019/1028-4427-2019-25-4-561-568
  18. Baino F, Fiume E. 3D printing of hierarchical scaffolds based on mesoporous bioactive glasses (MBGs)—Fundamentals and applications. Materials. 2020;13(7):1688. https://doi.org/10.3390/ma13071688
  19. Jones JR. Review of bioactive glass: from Hench to hybrids. Acta Biomater. 2023;9(1):4457-4486.
  20. Liu Z. Collagen-based Bio-scaffolds in Bone Tissue Regeneration. Highlights in Science, Engineering and Technology. 2025;130:6-11.